Влияние нейротрансмиттеров на состав жирных кислот и фотосинтетических пигментов зеленой микроводоросли Scenedesmus quadricauda

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В статье представлены новые данные о влиянии таких нейротрансмиттеров, как серотонин, норадреналин, дофамин, гистамин и ацетилхолин на жирнокислотный и пигментный состав зеленой микроводоросли Scenedesmus quadricauda (Turp.) Breb. К-1149. Было установлено, что ацетилхолин и, в меньшей степени, гистамин увеличивали общее содержание жирных кислот в клетках S. quadricauda, тогда как серотонин и дофамин снижали их содержание. Aцетилхолин, гистамин и норадреналин увеличивали процентное содержание полиненасыщенных жирных кислот; напротив, серотонин и дофамин увеличивали долю насыщенных жирных кислот. Ацетилхолин и, в меньшей степени, норадреналин увеличивали общее содержание хлорофилла на 1 г сухого веса у S. quadricauda, в то время как гистамин снижал содержание хлорофилла. Гистамин также увеличил соотношения хлорофилл a : хлорофилл b и каротиноиды/хлорофилл, которые снижались под влиянием дофамина. Влияние нейротрансмиттеров на состав жирных кислот микроводорослей и пигменты фотосинтетического аппарата можно рассматривать с точки зрения продолжающегося химического взаимодействия между микроводорослями и другими компонентами водной экосистемы, которые, как известно, продуцируют нейротрансмиттеры.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Цао Боян

Университет МГУ—Пекинский политехнический институт

Email: oleskiny@yandex.ru
Китай, Шэньчжэнь

О. Б. Чивкунова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: oleskiny@yandex.ru

Биологический факультет

Россия, Москва, 119991

А. Е. Соловченко

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: oleskiny@yandex.ru

Биологический факультет

Россия, Москва, 119991

Е. С. Лобакова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: oleskiny@yandex.ru

Биологический факультет

Россия, Москва, 119991

А. В. Олескин

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: oleskiny@yandex.ru

Биологический факультет

Россия, Москва, 119991

Список литературы

  1. Roshchina V.V. // Microbial Endocrinology: Interkingdom Signaling in Infectious Disease and Health. /Ed. М. Lyte. N.Y.: Springer Cham, 2016. V. 874. P. 25–77.
  2. Oleskin A.V., Shenderov B.A. Microbial Communication and Microbiota–Host Interactivity: Neurophysiological, Biotechnological, and Biopolitical Implications. N.Y.: Nova Science Publishers, 2020. 248 p.
  3. Parsaeimehr A., Sun Z., Dou X., Chen Y.F. // Biotechnol. Biofuels. 2015. V. 8. (1) P. 11. https://doi.org/10.1186/s13068-015-0196-0
  4. Czerpak R., Bajguz A., Jewiec P., Muszynska-Garstka M. // Ecohydrol. Hydrobiol. 2003. V. 3 (2). P. 223–229.
  5. Oleskin A.V., Postnov A.L., Boyang Cao // J. Pharm. Nutr. Sci. 2021. V. 11. P. 49–53. https://doi.org/10.29169/1927-5951.2021.11.07
  6. Oleskin A.V., Postnov A.L., Boyang Cao // J. Pharm. Nutr. Sci. 2021 V. 11. P. 144–150. https://doi.org/10.29169/1927-5951.2021.11.17
  7. Oleskin A.V., Kirovskaya T.A., Botvinko I.V., Lysak L.V. // Microbiology (Moscow). 1998. V. 67. № 3. P. 305–312.
  8. Solovchenko A., Gorelova O., Selyakh I., Pogosyan S., Baulina O., Semenova L. et al. // Algal Res. 2015. V. 11. P. 399–410. https://doi.org/10.1016/j.algal.2015.04.011.
  9. Wellburn A. // J. Plant. Physiol. 1994. V. 144. P. 307–313.
  10. Kates M. Techniques of Lipidology: Isolation, Analysis, and Identification of Lipids, 2nd Ed. Amsterdam: Elesevier, 1986. 464 p.
  11. Balasubramaniam V., Gunasegavan R.D., Mustar S., Lee J.C., Mohd Noh M.F. // Molecules. 2021. V. 26. P. 943. https://doi.org/10.3390/molecules26040943
  12. Dasan Y.K., Lam M.K., Yusup S., Lim J.W., Lee K.T. // Sci. Total Environ. 2019. V. 688. P. 112–128. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.06.181
  13. Hu J., Meng W., Su Y., Qian C., Fu W. // Front. Mar. Sci. 2023. V. 10. P. 1260709. https://doi.org/10.3389/fmars.2023.1260709
  14. Masojídek J., Torzillo G., Koblížek M. // Handbook of Microalgal Culture: Applied Phycology and Biorechnology. / Eds. A. Richmond, Q. Hu. Hoboken (NJ): John Wiley & Sons, 2013. P. 21–36.
  15. Piotrowska-Niczyporuk A., Bajguz A. // Plant Growth Regul. 2014. V. 73. P. 57–66. https://doi.org/10.1007/s10725-013-9867-7
  16. Tredici M.R., Rodolfi L., Biondi N., Bassi, N., Sampietro G. // Algal. Res. 2016. V. 19. P. 251–263. https://doi.org/10.1016/j.algal.2016.09.005
  17. Fabris M., Abbriano R.M., Pernice M., Sutherland D.L., Commault A.S., Hall C.C. et al. // Front. Plant Sci. 2020. V. 11. P. 279. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00279
  18. Oleskin A.V., Boyan Cao // Lomonosov Biol. J. 2023. V. 78. № 3. P.146–159. https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-78-3-10
  19. Powell K. // xPharm: The Comprehensive Pharmacology Reference. / Eds. S.G. Enna, D.B. Bylind. Amsterdam: Elsevier, 2007. P. 1–2.
  20. Roshchina V.V., Yashin V.A., Podunai Y.A. // Austin Environ. Sci. 2022. V. 7. № 3. P. 107–110.
  21. Oleskin A.V., Postnov A.L. Neurotransmitters as Сommunicative Аgents in Аquatic Ecosystems. // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2022. V. 77 № 1. P. 6–12. https://doi.org/10.3103/S0096392522010035

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Динамика роста культуры S. quadricauda в присутствии ацетилхолина (АХ) и без него. 1 – контроль; 2 – 1 мкМ АХ; 3 – 10 мкМ АХ; 4 – 100 мкМ АХ.

Скачать (72KB)

© Российская академия наук, 2024